22: Intoxications par les plantes

Chapitre 22 Intoxications par les plantes



Les végétaux (plantes et fruits) sont à l’origine d’environ 5 % des cas d’intoxication humaines, signalées par les centres antipoison en France. Généralement, il s’agit d’intoxications bénignes et la symptomatologie, lorsqu’elle est présente, est souvent précoce (dans les deux heures qui suivent l’ingestion) et essentiellement digestive. Les circonstances de l’intoxication sont accidentelles dans la majorité des cas et elles concernent surtout le jeune enfant. Cependant, certaines plantes contiennent des substances fortement toxiques (solanine, hétérosides, aconitine, autres alcaloïdes…) qui sont à l’origine d’intoxications sévères en rapport avec un geste suicidaire, une confusion avec une plante comestible au moment de la cueillette ou encore une consommation de plantes à visée « thérapeutique » ou addictive. Ces types d’intoxication, lorsqu’ils sont repérés nécessitent un traitement en milieu hospitalier et une surveillance clinique attentive.


Étant donné la très grande diversité des plantes et des baies de la flore mondiale, il nous a paru nécessaire de fixer des limites à ce travail. Nous ne présenterons donc ici que dix-sept plantes toxiques de France métropolitaine ou d’Outre-Mer, choisies en fonction de leur toxicité et/ou de la fréquence des intoxications. Nous engageons le lecteur intéressé par ce problème à se reporter aux diverses publications ou ouvrages généraux cités en référence à la fin de ce chapitre. Par ailleurs, le diagnostic toxicologique de ces intoxications requiert des méthodes analytiques modernes d’identification et de dosage des principes actifs toxiques ou de leurs métabolites. Pour cette raison, nous citerons principalement des méthodes actuelles par CG/SM ou CL/SM simple ou en tandem permettant d’identifier formellement et de doser dans les milieux biologiques courants (sang, urine, contenu gastrique, vomissures, cheveux, etc.) le ou les composé(s) toxique(s) et de suivre leur devenir afin de confirmer l’intoxication, de suivre son évolution pour évaluer les chances de survie du patient. Ces méthodes analytiques sont devenues essentielles en toxicologie médico-légale car il est nécessaire de pouvoir déterminer l’origine d’un empoisonnement et d’apprécier la responsabilité d’une plante dans le processus qui a conduit au décès de la victime. Dans chaque cas, un protocole analytique d’identification et de dosage du ou des principes actifs sera succinctement décrit.



Aconit napel (Aconitum napellus, Renonculacées)







Toxicologie analytique


Les principes actifs sont fragiles en solutions d’ammoniaque, de méthanol ou d’éthanol et l’utilisation de solvants protiques est à éviter. On préférera, pour l’extraction, l’acétonitrile ou le tétrahydrofurane.


En CL/SM, des auteurs ont utilisé une colonne C18, 150 × 4,6 mm avec une phase mobile tétrahydrofurane/acide trifluoracétique 0,3 %/glycérine. Les m/z des ions moléculaires protonés étaient respectivement 676 pour la jesaconitine, 646 pour l’aconitine, 632 pour la mesaconitine et 616 pour l’hypaconitine. La limite de détection était 2,5 ng injectés en mode balayage et de 100 pg injectés en mode en ions sélectionnés [6]. La CL/ SM-SM est d’une grande sensibilité pour l’aconitine puisque la limite de détection est de 0,001 ng/mL. Le m/z de l’ion parent est de 674 et les m/z des deux ions fils sont 368 et 586. Dans ce cas, la séparation est réalisée sur colonne C18, 150 × 3 mm, avec pour phase mobile un mélange de tampon formiate 2 mM, pH 3/MeOH, en gradient de concentrations. Récemment, une équipe japonaise a développé une méthode par CL/SM de détection de l’aconitine, de la mesaconitine, de l’hypaconitine et de la jesaconitine dans le sérum lors d’empoisonnements ; cette méthode a été utilisée pour réaliser une cinétique chez 40 adultes volontaires qui ont consommé des doses thérapeutiques d’une spécialité de médecine traditionnelle chinoise à base de trois espèces d’Aconit [7]. Les valeurs de m/z des ions moléculaires protonés étaient les mêmes que celles citées précédemment, un ion supplémentaire de m/z 683 était déterminé et correspondait à la méthyllylcaconitine. La limite de quantification était de 0,03 ng/mL. Les concentrations sanguines d’aconitine entraînant des signes cliniques d’intoxication à type d’arythmie variaient de 0,65 à 3,23 ng/mL [8]. Dans l’étude de Nakae [7], la concentration sanguine maximale mesurée pour une utilisation thérapeutique en médecine traditionnelle chinoise était, pour l’aconitine, de 0,12 ng/mL.



Belladone (Atropa belladona, Solanacées)








Ciguës, œnanthe safranée (Ombellifères)





Principes actifs et doses toxiques


Tous les organes des trois plantes sont toxiques. Le rhizome de la ciguë vireuse est riche en dérivés acétyléniques polyinsaturés : cicutoxine, cicutol, falcarindiol et autres composés voisins de l’œnanthe safranée. La cicutoxine bloque les canaux potassiques et a une action principalement neurotoxique. L’ingestion d’une racine est considérée comme toxique, deux racines seraient létales [3]. La grande ciguë contient des alcaloïdes pipéridiniques parmi lesquels on trouve la coniine qui est surtout présente dans les fruits mûrs ; 5 à 8 g de feuilles représentent une dose toxique pour l’homme. La coniine est un alcaloïde neurotoxique qui bloque la transmission nerveuse au niveau de la jonction neuromusculaire.




Toxicologie analytique


En toxicologie médico-légale, très peu de méthodes de dosage des principes actifs de cette famille sont décrites. Cependant récemment une équipe américaine a mis au point une méthode d’identification et de quantification de la coniine dans le sang et le liquide gastrique d’une jeune femme de 27 ans aux antécédents de psychose maniaco-dépressive, retrouvée morte dans un sac de couchage au milieu d’une forêt du nord de la Californie [13]. À ses côtés, se trouvait un sac contenant des débris végétaux. L’autopsie mettait en évidence de la matière végétale dans la bouche et le contenu gastrique ; de plus, il était noté des œdèmes pulmonaire et cérébral. Une analyse par CG/SM en mode balayage permettait d’identifier la coniine qui était ensuite quantifiée en mode SIM. La méthyl nicotine était utilisée comme standard interne et était ajoutée à 0,25 mL d’un échantillon de sang tamponné à pH 6,0. Après agitation et centrifugation, le surnageant était extrait en phase solide et élué par un mélange de solvants (39 parties de dichlorométhane/10 parties d’alcool isopropylique/ 1 partie d’ammoniaque). Le mélange était ensuite évaporé à sec sous un flux d’azote à température ambiante. Il était ajouté ensuite 50 μL de dichlorométhane et 5 μL d’anhydride butyrique contenant une petite quantité de 4-diméthylaminopyridine. Le mélange était maintenu à 22 °C pendant 22 minutes, évaporé puis repris par 50 μL de toluène ; 1 μL était ensuite analysé par CG/SM, la séparation était effectuée à l’aide d’une colonne capillaire de 15 m × 0,32 mm, 0,15 μm. Pour la quantification en mode SIM, les m/z des ions moléculaires sélectionnés étaient 84, 154 et 197 pour la coniine et 84, 147 et 176 pour l’étalon interne. La linéarité s’étendait de 10 à 1 000 ng/mL. Des dilutions multiples du contenu gastrique étaient réalisées afin de rester dans l’intervalle de linéarité. Dans le sang, la concentration de coniine était de 410 ng/mL et de 9 300 ng/mL dans le contenu gastrique. Par ailleurs, un criblage du sang par CL/SM en tandem trouvait du diazépam et du nordiazépam aux concentrations respectives de 81 ng/mL et < 50 ng/mL [13].



Chardon à glu (Atractylis gummifera, Astéracées)







Toxicologie analytique


Dans Callilepis laureola une équipe sud-africaine a mis au point une méthode de CL/SM pour la détection de l’atractyloside [15]. La séparation était réalisée sur une colonne Xterra® phényl avec une phase mobile composée d’un mélange tampon acétate d’ammonium 10 mM en solution aqueuse/méthanol/acétonitrile, en gradient de concentrations. La linéarité s’étendait de 100 ng/mL à 1 000 ng/mL. La limite de détection était de 100 pg/mL et la limite de quantification était de 250 pg/mL. Cette méthode est utilisée pour rechercher et quantifier l’atractyloside dans des échantillons de poudres végétales.


Une méthode analytique par CL/ESI-SM d’identification de l’atractyloside a été mise au point par cette même équipe sud-africaine lors d’empoisonnements par des plantes [16].


Une méthode a été développée récemment pour identifier et quantifier l’atractyloside et le carboxyatractyloside par CL/SM en tandem et CL/SM-SM-SM dans les liquides biologiques de lapins et dans deux cas d’empoisonnements humains par Atractylis gummifera [17]. La séparation était réalisée sur une colonne C18, 150 mm × 2,1 mm ; 3,5 μm. L’éluant était composé d’un mélange ternaire méthanol/acétonitrile/tampon formiate 2 mM, pH 4,5. De l’oxazépam-D5 était utilisé comme étalon interne. L’extraction était réalisée en phase solide sur cartouche SPE avec un tampon PBS, ajusté à pH 4,5. Le m/z de l’ion moléculaire parent était pour le carboxyatractyloside de 645 et les m/z des deux ions fils étaient de 689 et 769. Pour l’atractyloside, le m/z de l’ion parent était de 543 et ceux des deux ions fils de 645 et 725, en mode d’ionisation négative. Les concentrations dosées dans les deux cas d’empoisonnements humains étaient dans le sang : 756,1 ng/mL et 354,7 ng/mL pour l’atractyloside et le carboxyatractyloside, respectivement ; et variaient dans l’urine de 3,4 ng/mL à 452,4 ng/mL et de 68,9 ng/mL à 1855,2 ng/mL pour l’atractyloside et le carboxyatractyloside, respectivement [17].



Colchique (Colchicum autumnale, Liliacées)







Toxicologie analytique


De très nombreuses méthodes de dosage de la colchicine dans les milieux biologiques ont été décrites. Lors d’intoxications mortelles, la période d’agonie étant longue (plusieurs jours), il convient d’utiliser une méthode analytique suffisamment sensible afin de pouvoir doser des concentrations inférieures au ng/mL. Une méthode de chromatographie liquide CL/ESI-SM-SM triple quadrupôle a été mise au point pour doser la colchicine dans les liquides biologiques de prélèvements autopsiques [18]. 1 mL de sang cardiaque, de sang périphérique (fémoral), d’urine, de bile, de liquide gastrique, ou de vitré subissait une extraction par du chlorure d’ammonium saturé à pH 9,6 et un mélange de dichlorométhane/isopropanol 5 %. La séparation se faisait sur colonne C18 Xterra® avec une phase mobile constituée d’un mélange tampon formiate d’ammonium 2 mM, pH 3/acétonitrile, en gradient de concentrations. Le m/z de l’ion parent moléculaire était 400 et les m/z des deux ions fils étaient 282 et 310. La méthode était linéaire de 0,5 à 50 ng/mL, la limite de détection était de 0,1 ng/mL et la limite de quantification était de 0,5 ng/mL. Les intoxications mortelles sont surtout liées à des empoisonnements médicamenteux. Dans deux cas d’empoisonnements mortels par des spécialités à base de colchicine, les concentrations relevées variaient de 5,2 à 22,8 ng/mL dans le sang cardiaque, de 17,4 à 21,9 ng/mL dans le sang fémoral, de 19,4 à 148,5 ng/mL dans l’urine, de 42,8 à 1 818,5 ng/mL dans la bile, de 219,8 à 348 ng/mL dans le liquide gastrique et de 0,5 à 3 ng/mL dans l’humeur vitrée [18].



Daturas (Datura spp. et Brugmansia spp., Solanacées)



Description et habitat


Le genre Datura comprend une vingtaine d’espèces dont la plus répandue est Datura stramonium. Nous avons pour notre part identifié et analysé Datura inoxia et Brugmansia suaveolens ou un des hybrides de B. suaveolens poussant en Nouvelle-Calédonie [1921]. Sur le plan botanique, le Datura stramonium est une plante herbacée de 40 à 100 cm de hauteur, fleurissant de Juillet à Octobre et portant de grandes fleurs blanches en forme de trompettes. Son fruit est une grosse capsule ovoïde épineuse qui renferme de nombreuses graines noirâtres. Cette plante est également cultivée pour son aspect décoratif [2]. Brugmansia suaveolens est une plante arborescente aux magnifiques fleurs pendantes de couleur rose pâle à saumon, à l’odeur très parfumée et entêtante, fleurissant plusieurs fois dans l’année en milieu tropical ou en cultures sous serre.


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Aug 19, 2017 | Posted by in GÉNÉRAL | Comments Off on 22: Intoxications par les plantes

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