6 Examens directs

SQUAMES ET DÉBRIS CUTANÉS RÉCOLTÉS PAR BROSSAGE OU À L’AIDE DE CELLOPHANE ADHÉSIVE

TECHNIQUES

Le brossage du pelage, vigoureux et à rebrousse-poil, s’effectue au-dessus d’une feuille de papier blanc, préalablement pliée puis dépliée, pour rassembler les débris récupérés (fig. 6.1). On peut utiliser n’importe quel peigne ou brosse, à dents métalliques suffisamment espacées pour ne pas retenir les squames et les débris cutanés. Le matériel récolté est alors préparé et examiné au microscope, comme il est indiqué pour le produit des raclages cutanés (fig. 6.2). La récolte des squames et des débris cutanés peut aussi se faire à l’aide d’un morceau de cellophane adhésive, pressé contre la peau après avoir écarté les poils (éviter absolument de couper les poils) (fig. 6.3), puis appliqué sur une lame de verre, après dépôt, sur celleci, d’une goutte de lactophénol ou d’huile minérale.

Fig. 6.1 Technique du brossage : détachement des débris cutanés

Fig. 6.2 Technique du brossage : recueil des débris cutanés sur une feuille préalablement pliée et dépôt de ceux-ci sur une lame

Fig. 6.3 Test à la cellophane adhésive : pression du fragment de cellophane adhésive sur la peau

RÉSULTATS

Ces techniques permettent la recherche de tous les ectoparasites qui vivent à la surface de la peau, sous leurs différentes formes (adulte, immature et œufs), ou de leurs déjections (fig. 6.4), et ce, à partir d’un territoire cutané relativement étendu.

Fig. 6.4 Déjection de puces (× 40)

INTERPRÉTATION

Comme précédemment, la présence ou l’absence de parasites doit être interprétée à la lumière de l’anamnèse et de l’examen clinique. De même que l’observation de puces, ou de leurs déjections, ne signifie pas qu’une DAPP soit présente, la présence de Cheyletiella sp. n’implique pas qu’elles soient responsables des troubles observés, certains individus, adultes essentiellement, pouvant être porteurs asymptomatiques.

POILS PRÉLEVÉS PAR ÉPILATION ET TRICHOGRAMME

TECHNIQUE

Les poils sont prélevés à l’aide de pinces hémostatiques. On prélève les poils abîmés ou, à défaut, ceux situés à la périphérie des lésions. Les poils épilés sont examinés au microscope, comme il est indiqué pour le produit des raclages cutanés. Pour réaliser un trichogramme, destiné plus spécialement à l’examen de la conformation et de la structure des poils, il convient de placer les poils (une vingtaine) dans le même sens, parallèles entre eux et espacés.

RÉSULTATS

Cet examen permet, d’une part, la recherche d’éléments figurés tels que spores et filaments fongiques, lentes, œufs de Cheyletiella sp., voire Demodex sp. lorsque le raclage sur certaines zones s’avère délicat (espaces interdigités, bord palpébral, conduit auditif externe), et, d’autre part, d’apprécier l’aspect et la structure des poils (tableau 6.I).

Tableau 6.I Caractéristiques des différents éléments observés à l’examen direct des poils

Éléments figurés
Éléments	Caractéristiques et signification diagnostique
Spores et filaments fongiques	Spores externes et filaments internes : endo-ectothrix, dermatophytose
Lente	Coque ponctuée, taille de 1 mm, adhère au poil sur la plus grande partie de sa longueur : phtiriose (pédiculose)
Œuf de Cheyletiella sp	Coque non ponctuée, taille de 230 × 100 μm, adhère au poil par une extrémité (surtout chez le chat) : cheylétiellose
Demodex sp	Dans la gaine épithéliale interne ou dans un manchon pilaire : démodécie
Manchons pilaires	Cylindre de kératine : adénite sébacée granulomateuse, dermatose répondant à l’administration de vitamine A, acné féline, démodécie (canine et féline), dermatophy- tose, dysendocrinie
Trichogramme
Zone du poil	Aspect	Interprétation
Extrémité du poil	Pointe lisse, régulièrement effilée	Poil normal
	Fracturée	Alopécie traumatique (prurit)
	Fracture en « bois vert »	Trichoptilosis (rare)
	Renflement en « oignon »	Anomalie observée chez le chat Abyssin (rare)
	Torsion de 360°	Pili torti (rare)
Tige pilaire	Diamètre régulier ; cuticule, cortex et moelle bien visibles	Poil normal
	Agrégats de mélanosomes déformant le poil	Dysplasie des follicules pileux noirs, alopécie des robes diluées
	Renflements nodulaires, aspect en « brosse » après fracture	Trichorrhexie noueuse (rare)
	Épaississements localisés avec fissures longitudinales	Trichomalacie (rare)
	Déformations nodulaires avec amas de bactéries	Trichomycose axillaire (rare)
Bulbe	Mélange de poils anagènes et télogènes	Situation normale
	Poils en « point d’exclamation »	Alopecia areata (pelade)
	Poils télogènes exclusivement	Effluvium télogène, dysendocrinies, alopécie X

Éléments figurés

Le type de l’envahissement pilaire oriente l’identification du dermatophyte, même si la culture mycologique reste nécessaire (tableau 6.II). Ainsi, la présence de petites spores réfringentes, disposées en gaine autour des poils altérés, permet d’aboutir au diagnostic de dermatophytose microsporique due à Microsporum canis, ce qui est, de loin, le cas le plus fréquent (fig. 6.5 et 6.6). En cas de démodécie, des parasites sont parfois entraînés avec le poil lors de son arrachage et peuvent être observés au niveau de la gaine épithéliale interne ou dans un manchon pilaire.

Tableau 6.II Aspects des différents types d’envahissement pilaire, observés à l’examen direct des poils, lors de dermatophytose

Envahissement pilaire	Aspect à l’examen direct
Type microsporique (Microsporum canis)	Gaine continue de petites spores (2 mm de diamètre) tassées les unes contre les autres, autour du poil ; quelques filaments mycéliens difficiles à voir dans le poil
Type microïde (Trichophyton mentagrophytes)	Quelques filaments mycéliens, peu nombreux, à l’intérieur du poil ; des chaînettes de spores (2 à 3 μjm de diamètre) à sa surface
Type mégaspore (Microsporum gypseum)	Ne diffère du type microïde que par le diamètre des spores qui est de 4 à 6 μm